Фермент широко используется в биоорганической химии для изучения кинетики ферментов и изучения последовательности аминокислот белков, после гидролиза последних ферментом.

Надо отметить, что ферменты трипсаны крабов (КФ 3.4.21.32), отличаются своими свойствами от трипсинов млекопитающих (КФ 3.4.21.4) т. к. могут проявлять свою активность и при низких температурах и при довольно высоком давлении и при других особых условиях для ферментов.

Ученые их назвали карбоксипептидаза и коллагенолитическая сериновая протеаза.

Карбоксипептидаза КК имеет молекулярную массу 34 кДа, активируется ионами Со2+ и Сu2+, а ингибируется ЕДТА о-фенантролином, что говорит о том, что этот фермент относится к группе мераллокарбоксипептидаз.

В сыром панцире краба содержится от 5,4% до 17,0% хитина.

Отходы, получаемые при разделке краба используют для получения хитина, хитозана и кормовой муки, минеральных добавок и удобрений.

Химический состав кормовой муки из отходов (%): вода – 8%, жир – 2%, белок – 46%, зола – 35,0%, углеводы -9%.

Во Владивостоке в Тихоокеанском институте биоорганической химии ДО РАН из хитина краба камчатского (его панциря) получают хитозан.

Хитин краба состоит из поли-N-ацетил-D-глюклозамина, который плохо растворим. После его частичного или полного дезацелирования щелочью получают хитозан, который широко применяется в химии, медицине, сельском хозяйстве.

В 1986 г. по данным Хирано в Японии из 1 270 тонн, добытого хитина ракообразных, 1 170 тонн переработано в хитозан, 60 тонн на низкомолекулярные продукты, а 40 тонн использовано в виде нативного хитина.

В 1987 году выпуск хитина в США составил 600 тонн, а в Японии 700 тонн.

Хитозан (деацетилированный хитин) обладает широким спектром уникальных биологических активностей.

Одной их них является его способность индуцировать устойчивость к вирусным заболеваниям у растений, ингибировать вирусные инфекции в клетках животных и предотвращать развитие инфекций в зараженной культуре микроорганизмов.

Хитозан является линейным полимером, в котором остатки D-глюкозамина связаны β-1,4- связью.

Размер молекулы хитозана варьирует в широких пределах и характеризуется либо средней степенью полимеризации, либо средней молекулярной массой полимера.

При получении хитозана путем щелочного деацетилирования хитина часть аминогрупп остается ацетилированной.

Считается, что остатки N-ацетилглюкозамина случайным образом распределены по всей длине цепи полимера.

В кислой среде аминогруппы протонированых и определяют положительный заряд молекул хитозана.

Таким образом, в растворе хитозан представляет собой поликатион.

Именно такие особенности хитозана, как средняя степень его полимеризации, степень N-деацетилирования, величина положительного заряда, равно как и характер химических модификаций молекулы, являются факторами, существенно влияющими на биологическую активность хитозана.

Многими исследователями хитозана показано, что как сам хитозан, так и его производные ингибируют вирусные инфекции в различных биологических системах.

Хотя механизм противовирусной активности у него изучен на сегодня еще недостаточно.

Понятно, что анионные производные хитозана, ингибирующие ретровирусные инфекции в клетках животных, действуют иначе, чем поликатионные молекулы, влияющие на вирусные инфекции в растениях и на фаговые инфекции.

Полагают, что все механизмы такого влияния хитозана наблюдаются при взаимодействии хитозана с плазматической мембраной растительной клетки.

Результатом такого взаимодействия является усиление проницаемости и деструкции клеточной мембраны в результате неспецифического ввязывания поликатионных молекул хитозана.