Заболевание характеризуется неотделением плодных оболочек в течение 6–8 часов после рождения телёнка. Эта патология обусловливает развитие послеродовых заболеваний матки и длительное бесплодие. Заболевание наблюдается у 20–30 % коров. Непосредственной причиной задержания последа является ослабление сократительной функции матки или сращение котиледонов хориона с карункулами матки. Предрасполагающие причины заболевания заключаются в неполноценном кормлении коров и отсутствии моциона.

Это заболевание характеризуется замедлением обратного развития матки после родов до размеров, присущих этому органу у небеременных животных. Заболевание имеет широкое распространение у коров в зимнестойловый период. Наступление половых циклов у коров после родов при этом задерживается на 30 и более дней. Заболевание часто осложняется эндометритом. Непосредственная причина субинволюции матки заключается (как и при задержании последа) в ослаблении сократительной функции матки.

Различают три формы субинволюции матки – острую (тяжелую), развивающуюся от отёла до 12–14 дня, подострую (лёгкую), выявляющуюся с 14 до 25–30 дня после родов, и хроническую форму, которую устанавливают через 25–30 дней после рождения телят.

Матка при субинволюции обычно увеличена в 1,5–2,5 раза против нормы. Её рога находятся в брюшной полости, не реагируют или слабо реагируют на пальпацию. При острой форме наблюдается обильное выделение лохий тёмно-красного цвета до 12–14 дня после рождения телёнка. При нормальной инволюции лохии к этому сроку становятся светло-коричневыми или “прозрачными”. При подострой форме лохии выделяются в небольшом количестве до 30 дня, особенно после ночного отдыха животного. Цвет их остаётся тёмно-бурым, консистенция мазеподобная. Тонус рогов матки понижен. Их размер соответствует 2-месячной стельности. Хроническую субинволюцию диагностируют через 30–60 дней после родов по увеличению рогов матки и ослаблению их ригидности. При этом, у коров наблюдаются персистентное жёлтое тело в яичниках и ациклия. При подозрении на заболеваемость субинволюцией у коров, пришедших в охоту, берут цервикальную слизь (2,0 мл), вносят её в пробирку, добавляют к ней 2,0 мл 10 %-го раствора едкой щелочи и 10–15 капель 1,0 %-го раствора медного купороса. Тёмно-фиолетовый или тёмно-красный цвет смеси свидетельствует о наличии заболевания, и таких коров не осеменяют, а подвергают лечению. Слабое окрашивание смеси говорит о нормальном состоянии матки.

Заболевание регистрируется в течение года у 35–65 % коров. Возникновению заболевания способствуют следующие факторы: патологические роды, микробная контаминация матки и травмы при родовспоможении и искусственном осеменении, снижение резистентности у животных и повышение устойчивости микробов к действию лекарственных веществ, субинволюция матки, заболевание коров маститом и другие причины.

Заболевание проявляется на 5–6 день после родов выделениями гнойно-катарального экссудата. При фибринозном эндометрите в экссудате содержатся хлопья и пленки фибрина желтоватого цвета. При некротическом эндометрите экссудат имеет грязно-коричневый цвет и неприятный запах. Послеродовой эндометрит может протекать в подострой, хронической и субклинической формах. Особую опасность для воспроизводства представляет, скрыто протекающий (субклинический) эндометрит, так как обычными клиническими методами это заболевание в условиях производства установить трудно.

Скрытый эндометрит у коров чаще возникает после искусственного осеменения при использовании спермы с высокой бактериальной загрязненностью, нестерильных инструментов и при введении спермы коровам до охоты или после её окончания. Коровы со скрытым эндометритом составляют около 64 % от общего количества бесплодных животных (Н.И. Полянцев). Н.А. Флегматов предложил для диагностики вполне приемлемую лабораторную пробу. Для этого на предметное стекло наносят две капли (отдельно) оттаянной спермы, к одной из них добавляют каплю цервикальной слизи, полученную от коров в охоте, накрывают их покровными стеклами и исследуют под микроскопом подвижность спермиев. При наличии субклинического эндометрита спермин в капле слизи не двигаются, в контрольной капле их подвижность сохранена. С этой же целью можно использовать ляписную пробу по Гавришу. При этом у исследуемого животного собирают мочу. В пробирку вносят 2,0 мл мочи, добавляют 1,0 мл 5,0 %-го раствора ляписа и кипятят над газовой или спиртовой горелкой или над пламенем горящего спиртового раствора 2 минуты. Выпадение чёрного осадка в пробирке указывает на наличие заболевания, а коричневый или белый – на его отсутствие. При необходимости применяют бактериальное исследование цервикального секрета в ветлаборатории для обнаружения и идентификации микрофлоры и выявления её патогенности.